Chercheuse ou chercheur

    Roger Lippé , Ph.D.

    roger.lippe@umontreal.ca
    Roger Lippé
    Axe de recherche
    Maladies infectieuses et soins aigus
    Thème de recherche
    Infection, immunité et inflammation
    Adresse
    CHUSJ - Centre de Recherche
    Sur le Web

    Titres

    • Professeur titulaire, Département de pathologie et biologie cellulaire, Université de Montréal

    Formation

    • Études postoctorales en transport intracellulaire dans le laboratoire du Dr Marino Zerial, European Molecular Biology Laboratory (EMBL), Allemagne, 1995-2000
    • PhD en immunovirologie chez le Dr Wilfred Jefferies, Université de la Colombie-Britannique, 1989-1995
    • MSc en virologie au sein du laboratoire du Dr Frank Graham, Université McMaster, 1986-1989
    • BSc en biologie, option microbiologie, Université de Montréal, 1986-1986

    Intérêts de recherche

    Les objectifs à long terme du laboratoire sont de caractériser les interactions hôte-pathogène et de découvrir de nouveaux traitements thérapeutiques dans le contexte des virus herpétiques. Ces virus peuvent avoir des conséquences autant mineures que très sérieuses pour les nouveau-nés, les enfants ainsi que les adultes. Les travaux du laboratoire focalisent sur la voie de transport utilisée par le virus herpès simplex de type 1 (VHS-1), qui s’assemblent au noyau en identifiant les molécules impliquées et en caractérisant leurs mécanismes d'action. Ce mode de transport est particulier, car lors de l'infection, les capsides virales ne peuvent quitter le noyau pour rejoindre le cytoplasme via les pores nucléaires puisque trop volumineuses. Elles s'échappent plutôt du noyau par un processus singulier impliquant leur bourgeonnement au travers de la membrane nucléaire interne pour produire des virions enveloppés suivi de leur fusion avec la membrane nucléaire externe, générant ainsi des capsides nues dans le cytoplasme. Ce processus n’est toutefois pas unique aux virus herpétiques, car il a été démontré plus récemment qu’il est utilisé par les cellules pour exporter des particules de haut poids moléculaire de type hnRNP hors du noyau. Ces travaux démontrent, une fois de plus, que les virus sont d’excellents modèles pour étudier les processus cellulaires.

    Avancées du labo

    Afin d'étudier le transport intracellulaire du VHS-1, le labo a mis au point un essai in vitro unique au monde pour reconstituer cette étape, ce qui leur a permis de confirmer le précédent modèle. Cet essai, couplé à la spectrométrie de masse, a aussi permis l'identification des composantes cellulaires et virales présentes sur les capsides nucléaires, que le labo caractérise actuellement. Puisque le processus de sortie du virus est peu connu, le laboratoire examine également le rôle d'une glycoprotéine virale nommée gM. Cette protéine est rapidement et spécifiquement ciblée au noyau pendant l’infection, et ce avant même que le virus n’en sorte. Elle interagit en outre avec plusieurs protéines qui régulent la fusion induite par le virus et que l’équipe tente de mieux comprendre. Une autre étape particulière du transport du VHS-1 est sa réintégration dans la voie classique de biosynthèse au TGN, où les travaux du Pr Lippé et d’autres laboratoires ont démontré que le virus acquiert vraisemblablement son enveloppe finale par un processus que le labo tente de clarifier. Une fois enveloppé, le laboratoire a démontré que le virus voyage par les voies classiques de sécrétion impliquant la protéine kinase D de l'hôte. Des travaux récents du laboratoire suggèrent toutefois que les effecteurs de cette kinase jouent des rôles multiples tout au long de la voie de sortie du virus. 

    Le VHS-1 a donc un cycle de vie très complexe, mais les détails mécanistiques demeurent nébuleux. En outre, on connaît peu de la contribution de la cellule à toutes ces étapes. Afin de mieux comprendre le rôle des protéines de l'hôte dans la propagation du virus, un programme de protéomique a donc aussi été mis sur pied. Outre les résultats ci-haut mentionnés, ce programme a permis l'identification de 49 protéines incorporées dans les virus matures. Une étude par ARN d'interférence a confirmé que plusieurs de ces protéines modulent la propagation du virus. Il ne reste maintenant qu’à mieux comprendre leurs modes d'action. En parallèle, le laboratoire étudie le processus de maturation du virus par virométrie de flux, une approche hautement innovatrice développée par le Pr Lippé qui permet d'examiner individuellement et même d'isoler les particules virales. Cet outil permet maintenant au labo d’analyser diverses étapes de maturation des particules virales. 

    Expertises de recherche

    • Herpès
    • Virus
    • Interactions hôte-pathogène
    • Infection virales
    • Protéomique
    • Biologie cellulaire
    • Virologie
    • Virométrie de flux

    Sommaire de carrière

    Le Pr Lippé a complété sa formation en biologie cellulaire et virologie aux universités de Montréal (BSc), McMaster (MSc) et de la Colombie-Britannique (PhD) ainsi qu’un stage postdoctoral à l’EMBL en Allemagne. Il a ensuite établi son laboratoire en 2001 au Département de pathologie et biologie cellulaire de l’Université de Montréal à titre de professeur adjoint, puis agrégé et finalement titulaire. En 2019, son équipe s’est jointe au nouveau Centre de recherche du CHU Sainte-Justine, où le Pr Lippé poursuit ses travaux tout en maintenant son affiliation la Faculté de médecine de l’Université de Montréal. 

    Laboratoire

    Laboratoire du Dr Roger Lippé

    Prix et distinctions

    • Bourse Nouveau Chercheur des IRSC (2002-7)
    • Bourse Junior 1 du FRQS (2002-4; déclinée)
    • Bourse relève Médecine (2000)
    • Bourse postdoctorale de l’Institut Max-Planck (1999-2000)
    • Bourse postdoctorale du Conseil de la recherche médicale du Canada (1996-9)
    • Bourse postdoctorale EMBO (1995-7)
    • Bourse doctorale Steve Fonyo (1992-4)
    • Bourse doctorale du Conseil de la recherche médicale du Canada (1989-92)
    • Bourse de maîtrise du Conseil de la recherche médicale du Canada (1986-8)

    Financements majeurs

    • IRSC, CRSNG, FRQNT (CFI pour initialement équiper le labo en 2002)

    Présentations

    • Egress of the Herpes simplex virus type 1. 43rd Annual International Herpesvirus Workshop, Vancouver, Canada (2018)
    • Flow virometry: A novel and powerful approach to decipher viral egress. Second symposium of the Canadian Society for Virology, Halifax, Canada (2018)
    • Quantitative evaluation of Protein Heterogeneity within Herpes simplex type I Viral Particles. 42nd Annual International Herpesvirus Workshop, Ghent, Belgium (2017)
    • Herpes simplex virus type 1 (HSV-1) infectivity is modulated by its tegument content, 40th Annual International Herpesvirus Workshop, Boise, USA (2015)
    • Analysis of the HSV-1 Tegument by Flow Cytometry. 38th Annual International Herpesvirus Workshop, Grand Rapids, USA (2013)

    Publications

    • El Bilali, N.§, Khadivjam, B.§, Thornbury, M., Bonneil, E., Thibault, P. and Lippé, R. (2020). Proteomics of Herpes simplex virus type 1 nuclear capsids. J Virol (epub ahead of print). § Contribution équivalente des deux premiers auteurs
    • Boruchowicz, B., Hawkins, J., Cruz-Palomar, K. and Lippé, R. (2020). The XPO6 exportin mediates HSV-1 gM nuclear release late in infection. J Virol (e00753-20).
    • Lippé, R. (2020). Transport intracellulaire du Virus Herpès Simplex 1. Virologie 24:210-230
    • Lippé, R. (2020). Characterization of extracellular HSV-1 virions by proteomics. Methods Mol Biol. 2060:279-88
    • Khadivjam, B. El Bilali, N. and Lippé, R. (2020). Analysis and sorting of individual viral particles by flow virometry. Methods Mol Biol. 2060: 289-303
    • Roussel, E. and Lippé, R. (2018). Cellular Protein Kinase D Modulators Play a Role during Multiple Steps of Herpes Simplex Virus 1 Egress. J Virol 92: e01486-18
    • Lippé, R. (2018). Flow Virometry: a Powerful Tool To Functionally Characterize Viruses. J Virol. 92: e01765-17
    • El Kasmi, I., Khadivjam, B., Lackman, M., Duron, J., Bonneil, E., Thibault, P. and Lippé, R. (2017). Extended synaptotagmin 1 interacts with the Herpes simplex virus type 1 glycoprotein M and negatively modulates virus-induced membrane fusion. J Virol. 92: e01281-17
    • El Bilali, N., Duron, J., Gingras, D. and Lippé, R (2017). Quantitative evaluation of Protein Heterogeneity within Herpes simplex type I Viral Particles. J Virol 91: e00320-17
    • Rodriguez, L, Nguyen-Vi, M. Desjardins, A, Lippé, R., Fon, E and Leclerc N (2017). Rab7A regulates Tau secretion. J Neurochemistry 141: 592-605
    • Khadivjam, B., Stegen, C., Hogue-Racine, M.A., El Bilali, N., Döhner, K., Sodeik, B. and Lippé, R. (2017). The host ATP-Dependent RNA Helicase modulates the expression of HSV-1 viral genes. J Virol 91:e02411-16
    • Striebinger, H. Zhang, J., Ott, M., Funk, C., Radtke, K., Duron, J., Ruzsics, Z., Haas,J., Lippé, R. and Bailer, S.M. (2015). Subcellular trafficking and functional importance of Herpes simplex virus type 1 Glycoprotein M domains. J Gen Virol 96: 3313-3325. 
    • El Kasmi, I. and Lippé R. (2015). HSV-1 gN partners with gM to modulate the viral fusion machinery. J Virol, 89:2313-23.
 

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